在植物基因组学与转录组学研究领域,我们是否曾深受短读长测序技术的局限?例如转录本拼接不完整、无法准确识别融合基因、难以检测RNA修饰等。今天推荐一个正在迅速崛起的前沿技术——牛津纳米孔直接RNA测序(Direct RNA Sequencing, DRS),它正在彻底改变我们对植物转录组的理解方式。
直接RNA测序:直测完整天然RNA分子
直接RNA测序(Direct RNA Sequencing, DRS) 是牛津纳米孔技术(Oxford Nanopore Technologies, ONT)推出的一项革命性测序技术。它与传统RNA测序最根本的不同在于:无需将RNA逆转录为cDNA,也无需进行PCR扩增,而是直接对完整的、天然的RNA分子进行实时测序。
1 技术原理

单个RNA分子在牵引蛋白的引导下,以3‘→5’方向穿过纳米孔。不同碱基(以及经过化学修饰的碱基)通过纳米孔时会引起独特的电流变化。通过监测这些特征性电流信号,机器即可直接解码出RNA的序列信息,并同时识别碱基修饰。
2 核心优势
1. 无需逆转录与PCR扩增
DRS直接对天然RNA分子进行测序,避免了cDNA合成和PCR引入的偏好性与误差,数据更贴近真实生物学状态。
2. 全长转录本测序
直接获取从5’端到3′ poly(A)尾的完整RNA序列,无需拼接即可准确识别异构体、可变剪接事件和基因融合。
3. 同时检测RNA修饰
纳米孔信号可敏感反映碱基化学修饰(如m6A/m1A/m5C/m7G/hm5C/Ψ等),实现“一边测序列、一边测修饰”的多维组学分析。
4. 高分辨率poly(A)尾分析
直接读取poly(A)尾长度,结合异构体信息,精准研究 alternative polyadenylation (APA) 及其调控机制。
3 应用领域

1. 全长转录本鉴定:发现新基因、新异构体,尤其适用于复杂基因组物种(如多倍体、高杂合度植物)。
2. 可变剪接分析:精准解析剪接模式,识别组织或胁迫条件下的特异性剪接事件。
3. 融合转录本检测:识别基因间或基因与转座子间的融合事件,揭示基因组结构变异的功能影响。
4. poly(A)尾长度:直接测量poly(A)尾长度,研究其与mRNA稳定性、翻译效率的关系。
5. APA机制:直接检测不同 poly (A) 位点的选择,分析 APA 事件对基因表达的调控。
6. RNA修饰图谱构建:在全转录组范围内定位m⁶A、m⁵C等修饰位点,探索其调控功能。
直接RNA测序在植物领域创新发现
1 毛竹 (Moso Bamboo, Phyllostachys edulis)
● 转录本发现与注释提升:通过DRS技术,在毛竹中一次性鉴定了 22,360个 新型转录本,极大地完善和扩展了毛竹的转录组注释,为研究其快速生长机制提供了更全面的遗传信息基础。(Li et al., 2023)
● 可变多聚腺苷化(APA)的动态调控:研究发现,在毛竹笋的不同部位(基部和中部),基因倾向于使用不同的多聚腺苷化位点,这种全局性的APA位点转换可能与竹笋快速生长过程中的基因表达调控密切相关。(Li et al., 2023)
● m⁶A修饰的动态图谱:绘制了毛竹不同生长发育阶段的m⁶A修饰图谱,鉴定出多个在不同阶段被特异性甲基化的位点,揭示了RNA表观遗传修饰在毛竹生长中的潜在调控作用。(Li et al., 2023)
● 环状RNA的m⁶A修饰:首次发现毛竹中约有 11% 的环状RNA(circRNA)在其backsplice junction(反向剪接位点)附近发生m⁶A甲基化,这表明m⁶A可能作为一种重要的调控标记,参与了circRNA的生成或稳定性调控。(Wang et al., 2020)
● 环状RNA的鉴定与功能推测:通过改良的建库方法(环化反转录)结合DRS,成功鉴定出 470个 高可信度的circRNA。对其亲本基因的功能分析表明,这些circRNA可能参与染色体组织和分离等重要的细胞过程。(Wang et al., 2020)
2 拟南芥 (Arabidopsis thaliana)
● 揭示隐藏的转录组复杂性:即使在基因组注释最完善的模式植物中,DRS依然发现了 38,500个 新型转录本异构体和 8,700个 此前未知的独特剪接变体,颠覆了对拟南芥转录组复杂性的认知。(Parker et al., 2020; Zhang et al., 2020c)
● 精确解析关键基因的可变剪接:以开花关键调控基因 FLM 为例,DRS直接读取其全长,准确解析出19种剪接异构体,其中11种为的全新发现,这对于理解开花时间的精细调控至关重要。 (Parker et al., 2020)
● Poly(A)尾长度的组织特异性:首次在全转录组范围内直接测量了不同组织中的poly(A)尾长度,发现其分布具有显著的组织特异性(例如,花粉和种子中的poly(A)尾显著更长),为理解mRNA稳定性、翻译效率的组织特异性调控提供了新视角。 (Parker et al., 2020)
● m⁶A修饰的功能性验证:研究表明,当m⁶A位点被去甲基化后,转录本的3’末端加工会出现缺陷,导致其相对丰度下降,直接证明了m⁶A修饰在拟南芥mRNA成熟和稳定性维持中的关键功能。(Parker et al., 2020)
● 发现新型m⁶A写入器:鉴定出 FIOT1 (人类METTL16的同源蛋白) 是拟南芥中一种新的m⁶A甲基转移酶。FIOT1突变体表现出全局m⁶A水平下降和早花表型,将m⁶A修饰与植物开花时间调控直接联系起来。 (Xu et al., 2022)
● 转座子-基因嵌合转录本的广泛存在与功能:利用DRS长读长优势,精准鉴定了由约 3000个 基因位点产生的转座子-基因嵌合转录本,并发现转座子的插入位置(如3′ UTR)可以调控宿主基因在环境胁迫下的表达稳定性,揭示了转座子作为调控元件的重要作用。(Bertheller et al., 2023)
3 水稻 (Rice, Oryza sativa) &野生稻属 (Oryza spp.)
● 融合基因的进化研究:通过对多个稻属物种的比较分析,鉴定出 310个 融合转录本。计算其进化速率和固定频率,发现它们虽然起源频繁但固定下来的较少,受到了强烈的纯化选择,为“融合是新基因起源的重要机制”提供了有力的进化证据。(Zhou et al., 2022)
● m⁶A修饰的组织特异性图谱:构建了水稻6种不同组织的m⁶A修饰图谱,发现 276至2042个 转录本表现出明显的组织特异性m⁶A修饰模式,表明m⁶A可能参与了水稻组织分化和功能特化的调控。(Yu et al., 2023a)
● m⁵C修饰响应非生物胁迫:研究发现,在高盐胁迫条件下,发生m⁵C修饰的下调基因显著富集于抗逆反应通路,提示m⁵C修饰可能通过调控这些基因的表达参与水稻的盐胁迫应答。(Wu et al., 2024)
4 多倍体作物
油菜 (Brassica napus):
● 多倍体剪接复杂性:成功比较了异源四倍体油菜与其二倍体亲本(甘蓝和甘蓝型油菜)之间复杂的可变剪接模式,为理解多倍化过程中转录组的重编程和适应性进化提供了重要线索。(Li et al., 2022)
悬铃木 (London Plane, Platanus x acerifolia):
● 多倍化层级与剪接差异:在十二倍体悬铃木中,发现了 1,854个 与六倍体不同的可变剪接事件。这些十二倍体特有的转录本显著富集于DNA修复和重组调控通路,推测它们可能在维持更高倍性基因组的稳定性中发挥重要作用。(Yan et al., 2023)
5 林木
毛果杨 (Populus trichocarpa):
● 干旱胁迫下的APA重编程:研究发现,在干旱胁迫下,毛果杨茎部木质部形成层细胞中,基因更倾向于使用远端poly(A)位点,导致产生更长3′ UTR的转录本,同时长poly(A)尾的转录本比例也显著增加,这可能是植物应对胁迫的一种转录后调控策略。(Gao et al., 2022)
● 胁迫响应中的表观转录组与蛋白质组联动:研究将DRS与蛋白质组学结合,发现干旱胁迫不仅引发了广泛的表观转录组(m⁶A) 变化,还导致了相应的蛋白质组重塑,揭示了从RNA修饰到蛋白质功能的胁迫响应链条。 (Gao et al., 2022)
松树 (Pine):
● 养分胁迫下的m⁶A与APA耦合:在铵盐营养处理下,松树根中可变多聚腺苷化(APA)位点的使用变化与m⁶A沉积的增加显著相关,揭示了RNA修饰与3’末端加工在养分胁迫响应中的协同作用。(Ortigosa et al., 2022)
6 园艺作物
草莓 (Strawberry):
● 果实发育中的转录组动态:在草莓果实发育和成熟过程中,发现了 110,888个 新型转录本,并精确刻画了白色果期是许多未报道转录本表达的关键转换期,为理解果实品质形成提供了新的分子基础。 (Chen et al., 2022)
柑橘 (Citrus spp.):
● 跨物种比较转录组学:对9个柑橘物种进行DRS分析,不仅预测了数千个新转录本,还发现了 2,613-3,389个 新的lncRNA。首次在近缘物种间系统分析了同源基因间异构体数量的变异,为柑橘的进化与驯化研究提供了新资源。 (Hu et al., 2022)
卡那拉蓟 (Cynara cardunculus):
● 基因模型校正与注释提升:利用DRS的长读长数据,对基于短读长序列组装的基因模型进行了大幅校正,共修正了 13,039个 基因模型,将完全组装的基因和转录本异构体的数量分别提升了 15% 和 18%,显著改善了该非模式植物的基因组注释质量。(Puglia et al., 2020)
7 禾谷类作物
小麦 (Wheat):
● 种子发育早期的非编码RNA世界:研究发现,在小麦种子发育早期,表达了大量长链非编码RNA(lncRNA)和LTR逆转录转座子相关的转录本。共发现了 796个 新的lncRNA,且其中大量含有转座子衍生序列,揭示了转座子在塑造复杂基因组转录组中的活跃性。(Kirov et al., 2020)
玉米 (Maize):
● m⁶A修饰调控翻译效率:通过整合DRS(检测m⁶A和APA)和多核糖体分析,发现m⁶A修饰富集于3’UTR region,并与使用远端APA位点正相关。更重要的是,发生m⁶A修饰的mRNA其翻译效率显著降低,揭示了m⁶A在玉米中作为一种翻译抑制标记的功能。 (Luo et al., 2020)
8 药用植物
喜树 (Camptotheca acuminata):
● 喜树碱生物合成调控网络的完善:利用DRS数据,对喜树的转录组进行了大幅修正,校正了 4,746个 基因中的 5,692个 可变剪接事件。更重要的是,发现了 15个 可能调控抗癌药物喜树碱生物合成途径的新转录因子,为通过合成生物学手段提高喜树碱产量提供了新的候选调控靶点。(Zhang et al., 2023)
参考文献
1. Zhu XT, Sanz-Jimenez P, Ning XT, Tahir Ul Qamar M, Chen LL. Direct RNA sequencing in plants: Practical applications and future perspectives. Plant Commun. 2024;5(11):101064. doi:10.1016/j.xplc.2024.101064
2. Berthelier, J., Furci, L., Asai, S., Sadykova, M., Shimazaki, T., Shirasu, K., and Saze, H. (2023). Long-read direct RNA sequencing reveals epigenetic regulation of chimeric gene-transposon transcripts in Arabidopsis thaliana. Nat. Commun. 14:3248.
3. Chen Q., Lin X., Tang W., Deng Q., Wang Y., Lin Y., He W., Zhang Y., Li M., Luo Y., et al. Transcriptomic complexity in strawberry fruit development and maturation revealed by nanopore sequencing. Front. Plant Sci. 2022;13:872054. doi: 10.3389/fpls.2022.872054.
4. Gao Y., Liu X., Jin Y., Wu J., Li S., Li Y., Chen B., Zhang Y., Wei L., Li W., et al. Drought induces epitranscriptome and proteome changes in stem-differentiating xylem of Populus trichocarpa. Plant Physiol. 2022;190:459–479. doi: 10.1093/plphys/kiac272.
5. Hu X.L., You C., Zhu K., Li X., Gong J., Ma H., Sun X. Nanopore long-read RNAseq reveals transcriptional variations in citrus species. Front. Plant Sci. 2022;13:1077797. doi: 10.3389/fpls.2022.1077797.
6. Kirov I., Dudnikov M., Merkulov P., Shingaliev A., Omarov M., Kolganova E., Sigaeva A., Karlov G., Soloviev A. Nanopore RNA sequencing revealed long non-coding and ltr retrotransposon-related RNAs expressed at early stages of triticale seed development. Plants. 2020;9:1794. doi: 10.3390/plants9121794.
7. Li M., Hu M., Xiao Y., Wu X., Wang J. The activation of gene expression and alternative splicing in the formation and evolution of allopolyploid Brassica napus. Hortic. Res. 2022;9:uhab075. doi: 10.1093/hr/uhab075.
8. Li T., Wang H., Zhang Y., Wang H., Zhang Z., Liu X., Zhang Z., Liu K., Yang D., Zhang H., Gu L. Comprehensive profiling of epigenetic modifications in fast-growing Moso bamboo shoots. Plant Physiol. 2023;191:1017–1035. doi: 10.1093/plphys/kiac525.
9. Luo J.H., Wang Y., Wang M., Zhang L.Y., Peng H.R., Zhou Y.Y., Jia G.F., He Y. Natural variation in RNA m(6)a methylation and its relationship with translational status. Plant Physiol. 2020;182:332–344. doi: 10.1104/pp.19.00987.
10. Ortigosa F., Lobato-Fernández C., Pérez-Claros J.A., Cantón F.R., Ávila C., Cánovas F.M., Cañas R.A. Epitranscriptome changes triggered by ammonium nutrition regulate the proteome response of maritime pine roots. Front. Plant Sci. 2022;13:1102044. doi: 10.3389/fpls.2022.1102044.
11. Parker M.T., Knop K., Sherwood A.V., Schurch N.J., Mackinnon K., Gould P.D., Hall A.J., Barton G.J., Simpson G.G. Nanopore direct RNA sequencing maps the complexity of Arabidopsis mRNA processing and m(6)A modification. Elife. 2020;9:e49658. doi: 10.7554/eLife.49658.
12. Puglia G.D., Prjibelski A.D., Vitale D., Bushmanova E., Schmid K.J., Raccuia S.A. Hybrid transcriptome sequencing approach improved assembly and gene annotation in Cynara cardunculus (L.) BMC Genom. 2020;21:317. doi: 10.1186/s12864-020-6670-5.
13. Wang Y., Zou Q., Li F., Zhao W., Xu H., Zhang W., Deng H., Yang X. Identification of the cross-strand chimeric RNAs generated by fusions of bi-directional transcripts. Nat. Commun. 2021;12:4645. doi: 10.1038/s41467-021-24910-2.
14. Wu Y., Shao W., Yan M., Wang Y., Xu P., Huang G., Li X., Gregory B.D., Yang J., Wang H., Yu X. Transfer learning enables identification of multiple types of RNA modifications using nanopore direct RNA sequencing. Nat. Commun. 2024;15:4049. doi: 10.1038/s41467-024-48437-4.
15. Xu T., Wu X., Wong C.E., Fan S., Zhang Y., Zhang S., Liang Z., Yu H., Shen L. Fiona1-mediated m(6)A modification regulates the floral transition in Arabidopsis. Adv. Sci. 2022;9:e2103628. doi: 10.1002/advs.202103628.
16. Yan X., Chen X., Li Y., Li Y., Wang F., Zhang J., Ning G., Bao M. The abundant and unique transcripts and alternative splicing of the artificially autododecaploid london plane (platanus x acerifolia) Int. J. Mol. Sci. 2023;24:14486. doi: 10.3390/ijms241914486.
17. Yu F., Qi H., Gao L., Luo S., Njeri Damaris R., Ke Y., Wu W., Yang P. Identifying RNA Modifications by Direct RNA Sequencing Reveals Complexity of Epitranscriptomic Dynamics in Rice. Dev. Reprod. Biol. 2023;21:788–804. doi: 10.1016/j.gpb.2023.02.002.
18. Zhang H., Li G., Fu C., Duan S., Hu D., Guo X. Genome-wide identification, transcriptome analysis and alternative splicing events of Hsf family genes in maize. Sci. Rep. 2020;10:8073. doi: 10.1038/s41598-020-65068-z.
19. Zhang H., Shen X., Sun S., Li Y., Wang S., Wei J., Guo B., Sun C. Integrated transcriptome and proteome analysis provides new insights into camptothecin biosynthesis and regulation in Camptotheca acuminata. Physiol. Plant. 2023;175:e13916. doi: 10.1111/ppl.13916.
20. Zhou Y., Zhang C., Zhang L., Ye Q., Liu N., Wang M., Long G., Fan W., Long M., Wing R.A. Gene fusion as an important mechanism to generate new genes in the genus Oryza. Genome Biol. 2022;23:130. doi: 10.1186/s13059-022-02696-w.
