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瑞兴生物

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功能基因组 · 3′ 端加尾

Poly(A)-seq poly(A) 尾长度测序

mRNA 3′ 端那条 poly(A) 尾不是摆设——它的长短直接影响 mRNA 的稳定性、转运和翻译效率。Poly(A)-seq 在全基因组水平测量 poly(A) 尾长度,把"尾巴变长还是变短"变成可定量的数据,用来解析 mRNA 降解和翻译的动态调控过程。

  • 全基因组 poly(A) 尾长度
  • 非 A 核苷酸检出
  • 与 Ribo-seq / RNA-seq 连用
  • 直接、便捷、通量高
  • 动植物均可
尾长定量逐个转录本测量 poly(A) 尾长度分布
RNA≥10 µg细胞 ≥2×10⁷;组织送样量见送样表
Ribo-seq可连用探索 poly(A) 尾变化与翻译效率的关系
RNA-seq可连用探索 poly(A) 尾变化与 mRNA 稳定性的关系
01

技术简介

真核生物在转录过程中会对 RNA 进行一系列加工,例如 5′ 端加 cap 和 3′ 端加多聚腺苷——Poly(A) 尾。1971 年 Edmonds 就发现 mRNA 具有 poly(A) 尾巴:它是 RNA 转录后在其 3′ 末端,通过非模板方式,由多种调控因子 / 酶添加的一连串碱基,这些碱基绝大部分是 A。

poly(A) 尾巴是绝大多数真核生物 mRNA 和长链非编码 RNA 的必要结构组分,对于 RNA 的转运、稳定性、翻译等至关重要。Poly(A)-seq,即 Poly(A) 尾长度测序,能够在全基因组水平上测量 poly(A) 尾巴的长度。

大多数真核 mRNA 的 3′ 非翻译区域下游含有一个非模板化的 poly(A) 尾巴,这个尾巴有助于 mRNA 的稳定和向细胞质的运输。poly(A) 尾巴长度会影响 mRNA 的翻译效率,因此 Poly(A)-seq 可以作为一种潜在工具,去解析 mRNA 降解和翻译的动态调控过程,也能够发现一些 RNA 裂解和加尾的未知特点。

Poly(A)-seq 原理:测定 mRNA 3' 端 poly(A) 尾长度
Poly(A)-seq:逐个转录本测量 poly(A) 尾长度
02

技术优势

直接、便捷

直接测定 poly(A) 尾长度,不需要复杂的推断模型。

容易实现

建库路线成熟,实验操作门槛低,可复现性高。

成本低

相比其他 3′ 端测序方案,单位样本成本更有优势。

通量高

一次实验覆盖全转录组范围的 poly(A) 尾长度测量。

可信度高

尾长由测序直接读取,不做模型外推,结果可靠。

信息量丰富

除尾长外还可获得尾内非 A 核苷酸组成等信息。

03

技术应用

翻译效率与蛋白定位

poly(A) 尾长度影响 mRNA 翻译效率与蛋白定位,是转录后调控的重要一环。

mRNA 代谢与转运

参与 mRNA 的代谢、转运、mRNA 的衰变与核输出过程。

植物防御机制

在植物应激响应与防御机制研究中,poly(A) 尾动态变化是重要调控层。

肿瘤药物靶点

肿瘤细胞中 poly(A) 尾调控异常,与癌基因表达和药物响应相关。

与 Ribo-seq 连用

可探索 mRNA poly(A) 尾的变化与翻译效率之间的调控关系。

与 RNA-seq 连用

可探索 poly(A) 尾的变化与 mRNA 稳定性之间的关系。

04

技术流程

1

RNA 提取与质检

提取总 RNA,检测完整性与纯度

2

片段化

RNA 片段化,保留 3′ 端 poly(A) 尾区域

3

文库构建

oligo(dT) 富集带尾片段,构建测序文库

4

高通量测序

测序读取 3′ 端序列与 poly(A) 尾长度

5

尾长定量

比对参考基因组,输出逐个转录本尾长

6

联合分析

与 RNA-seq / Ribo-seq 数据整合解析调控

Poly(A)-seq 数据分析结果展示
Poly(A)-seq 数据分析结果展示
05

样本要求

起始量要求高于普通 RNA-seq,因为需要足够的带尾片段来测量尾长,建议按送样量上限准备。

样本类型送样量说明
RNA(自行提取)≥10 µgA260/A280 1.8–2.2、浓度 ≥100 ng/µL、RIN ≥7;干冰运输
细胞≥2×10⁷ 个(干体积 ≥10 µL)TRIzol 充分裂解后 −80 ℃ 保存;勿用胰酶消化
动物组织 · 心、脑、肾、肺≥500 mg取新鲜组织,块尽量 ≤0.5 cm;预冷 PBS 或生理盐水洗去血迹,液氮速冻后 −80 ℃ 保存,干冰运输
动物组织 · 肝、脾、胃≥200 mg
动物组织 · 皮肤、血管、骨等坚韧组织≥500 mg
动物组织 · 节肢动物≥500 mg
植物组织≥1 g选健康幼嫩组织;70% 酒精冲洗表面后液氮速冻 20 min 以上
真菌干体积 ≥100 µL提前沟通物种与培养条件
全血≥16 mL(可混样)紫头 EDTA 抗凝管采集,冰袋 2–8 ℃ 运输
免疫细胞干体积 ≥100 µL一般 10 µL 细胞干体积对应约 1×10⁶ 个细胞

poly(A) 尾测量对 RNA 完整性要求较高,样本 RIN 建议 ≥7。完整版要求以最新版《送样规范》为准。

06

分析内容

标准分析 STANDARD

  1. 原始数据质控reads 质量、接头与长度分布评估
  2. 比对与定量比对参考基因组,定位 reads 的 3′ 端坐标
  3. 尾长测量逐个转录本的 poly(A) 尾长度分布统计
  4. 非 A 核苷酸分析检测 poly(A) 尾中散在分布的非 A 碱基
  5. 组间差异分析分组间尾长分布比较,筛选显著变化转录本

高级分析 ADVANCED

  1. 与 RNA-seq 联合尾长变化 × 表达量变化,关联 mRNA 稳定性
  2. 与 Ribo-seq 联合尾长变化 × 翻译效率,解析翻译调控
  3. PAB 结合分析结合 poly(A) 结合蛋白数据解释差异结合
  4. 功能富集尾长变化基因的 GO / KEGG 富集
  5. 降解动态解析结合时间序列数据推断 mRNA 衰变速率
07

应用案例

案例一
IF 9.4 Genome Biology · 拟南芥

Impact of poly(A)-tail G-content on Arabidopsis PAB binding and their role in enhancing translation

poly(A) 尾中鸟苷酸含量对拟南芥 PAB 结合的影响及其在增强翻译中的作用

期刊:Genome Biology(IF 9.4,2024 JCR) · 发表时间:2019 年
阅读原文:doi.org/10.1186/s13059-019-1799-8

样本与方法:拟南芥;全长 poly(A) 尾测序 + 下游生物信息学算法 + CLIP-seq、ribo-seq 与 mRNA 稳定性检测。
研究发现:该技术在拟南芥的 poly(A) 加尾调控项目研究中得到应用,揭示了拟南芥 poly(A) 尾介导的全新转录后调控机制——在 poly(A) 尾中散在分布的鸟苷酸(G)可通过抑制与 poly(A) 结合蛋白(PAB)的相互作用降低 mRNA 的翻译效率。

在本课题中,通过对全长 poly(A) 尾进行测序并开发下游生物信息学算法提取高质量测序信息,发现在拟南芥的 poly(A) 尾中也存在非 A 核苷酸,并且同样是 G 的含量最高。研究人员随后以拟南芥 poly(A) 结合蛋白家族核心成员 AtPAB2、AtPAB4 和 AtPAB8 为研究对象,构建了一系列重要的突变体,进一步结合 CLIP-seq、ribo-seq 和 mRNA 稳定性检测等高通量实验技术,在全基因组水平对 poly(A) 尾及其结合蛋白 PAB 的分子生物学功能进行了系统性研究,得出以下结论:

  • AtPAB 广泛结合植物体内 mRNA 的 poly(A) 尾,但对不同 mRNA 的结合效率存在明显差异;
  • 拟南芥中 10% 的 poly(A) 尾含有至少一个鸟苷(G),其含量在不同 mRNA 中的分布范围为 0.8–28%;
  • AtPAB 对不同 mRNA 的差异结合可以部分被其 poly(A) 尾中 G 含量的差异所解释——A 的"纯度"越高,其与 AtPAB 的结合越强;
  • AtPAB 对 mRNA 的结合可以提高 mRNA 的翻译效率;
  • 在 atpab 突变体中,带有不含 G 的"纯 poly(A) 尾"的 mRNA 翻译效率降低更为明显;
  • atpab2、atpab4、atpab8 三突变体纯合致死,atpabs 的双突变体呈现多种发育异常表型,暗示了由 poly(A) 尾与其结合蛋白介导的翻译调节机制对植物的正常生长发育具有至关重要的调控作用。

该研究充分展示了二代测序技术与生物信息学算法的结合在解析生物大分子调控过程中的强大优势,其结果阐明了植物 poly(A) 尾中的 G 含量可通过抑制 PAB 结合影响蛋白翻译效率,是对近代分子生物学中心法则的拓展与创新,对探究其他物种中 mRNA 的转录后调控机理具有重要参考价值。

08

常见问题

Poly(A)-seq 和 PAS-seq 怎么选?
两者都围绕 poly(A) 尾巴,但回答的不是同一个问题。Poly(A)-seq 量的是尾巴有多长,回答去腺苷化、mRNA 稳定性与翻译效率;PAS-seq 找的是加尾位点在哪里,回答 3′UTR 长短与选择性多聚腺苷酸化(APA)。想知道尾巴长短变化选 Poly(A)-seq,想知道位点切换选 PAS-seq。
为什么起始量要求比普通 RNA-seq 高?
尾长测量需要足够多的、覆盖 3′ 端 poly(A) 尾的 reads 才能给出稳定的长度分布,文库复杂度要求更高。按送样规范,RNA ≥10 µg、细胞 ≥2×10⁷、组织 ≥200–500 mg。样本量确实不足时,可考虑改用三代方案(如 ONT-DRS 可直接读 poly(A) 尾),但 RNA 需求量更大,需先评估。
能测出 poly(A) 尾里的非 A 碱基吗?
能,这正是该技术的亮点之一。拟南芥研究发现 10% 的 poly(A) 尾含有至少一个鸟苷(G),含量范围 0.8–28%,且 G 含量越高与 PAB 结合越弱、翻译效率越低。这类信息是推断尾巴功能的重要依据。
需要多少生物学重复?
组间尾长差异分析建议每组至少 3 个生物学重复。尾长分布本身受细胞状态、取材时间影响较大,重复不足时组间差异难以与个体波动区分。
和 Ribo-seq、RNA-seq 一起做有什么好处?
三个数据放在一起才能闭环:Poly(A)-seq 给尾长,RNA-seq 给表达量,Ribo-seq 给翻译效率。三者联合可以回答"尾巴变长 / 变短之后,mRNA 是更稳定了还是更容易被翻译了"——这是单靠任何一个数据都答不上来的。
植物样本有什么特殊要求?
植物组织送样量 ≥1 g,选健康幼嫩组织,70% 酒精冲洗表面后液氮速冻 20 min 以上。植物细胞壁和多糖多酚会增加 RNA 提取难度,某些物种可能需要调整提取方案,建议提前沟通物种类型。
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